Читать онлайн «Исследования в консервации культурного наследия. Выпуск 2». Страница 79

Использование вышеперечисленных средств измерения позволяет добиваться создания оптимальных условий освещения (нормируемых уровней освещенности при создании комфортных условий для восприятия музейных предметов). При использовании вариантов освещения, выполненных фирмой «Дизарт» (представительство ЭРКО в России) с поворотными светильниками на шинопроводах, измерение уровней освещенности (при повороте светильников) и цветности излучений позволило создать нормируемые уровни освещенности на предметах и обеспечить приемлемое качество зрительного восприятия (ил. 1–3).

Технические средства контроля температуры освещаемых предметов

Постоянство температуры поверхности освещаемых музейных предметов – одно из важных требований к источникам света, применяемым при выполнении реставрационных работ (не более 5оС) и в экспозиции (не более 1оС).

Для контроля за температурой поверхности используются портативные электронные термометры, снабженные контактными датчиками. Диапазон измеряемых температур – от –40 до +200оС. Отечественные разработчики предлагают ряд приборов, среди которых термометры фирмы «Темп», среди зарубежных приборов можно выделить приборы фирмы «Testo».

При необходимости использования бесконтактных приборов (например, при аварийном состоянии сохранности предмета, не высохших реставрационных вставках и т. д.) возможно измерение приборами «Thermo Point» шведской фирмы «Flir Sistems».

1. Закон РФ «О единстве средств измерений».

2. ГОСТ 8.513-84 Государственная система обеспечения единства измерений. Поверка средств измерений. Организация и порядок проведения.

3. Музейное хранение художественных ценностей: Практическое пособие [Текст]. – М.: ГосНИИР. – 1995.

4. ГОСТ 7.65–92 Система стандартов по информации, библиотечному и издательскому делу. Кинодокументы, фотодокументы и документы на микроформах. Общие требования к архивному хранению.

5. ГОСТ 7.50-2002 Система стандартов по информации, библиотечному и издательскому делу. Консервация документов. Общие требования.

6. Микроклимат церковных зданий [Текст]. – М.: РИО, ГосНИИР. – 2000.

7. Практические рекомендации IESNA по освещению музеев и художественных галерей. IESNA RP-30-96.

8. Инструкция по учету и хранению музейных ценностей, находящихся в государственных музеях СССР (от 17.07. 1985).

9. Рекомендации по проектированию искусственного освещения музеев. Министерство культуры СССР [Текст] (Тяжпромэлектропроект, ГосЭрмитаж, ГосНИИР). – Л. – 1988.

10. ГОСТ Р 8.586.-01 Средства измерений характеристик ультрафиолетового, видимого и инфракрасного излучений для обеспечения сохранности музейных экспонатов. Методики поверки (ВНИИОФИ, ГосНИИР). – 2001.

Исследования микробиологического повреждения кожаных переплетов проводятся в Российской национальной библиотеке несколько лет [1]. Рост микроорганизмов на коже в основном обусловлен неблагоприятными условиями хранения, аварийными ситуациями, плохим состоянием помещений. В настоящее время около 25 % печатных документов, рукописей, хранящихся в Российской национальной библиотеке, и 30 % – в Российской государственной библиотеке, имеют различные повреждения, что затрудняет или полностью исключает их использование [2]. Большую часть документов в кожаных переплетах составляют издания, обладающие исторической и культурной ценностью, поэтому их сохранение является важнейшей задачей консервации документов.

Видовой и количественный состав микробиоты кожи изучен по сравнению с микробиологическим составом других материалов гораздо меньше. Поэтому выделение и идентификация микроорганизмов, присутствующих на коже и повреждающих ее, представляет не только теоретический, но и практический интерес.

Повреждение кожи микромицетами исследовали при выращивании культур, выделенных с поверхности поврежденных переплетов из фондов трех библиотек: Российской национальной библиотеки (РНБ), Тюменской областной научной библиотеки (ТОНБ) и Астраханской областной научной библиотеки (АОНБ).

В работах многих авторов в качестве деструкторов кожи отмечаются культуры грибов родов Chaetomium, Stachybotris, Stemphylium, Cladosporium, Aspergillus, Penicillium, Sporotrichum [3, 4, 5]. Из фондов РНБ и региональных библиотек с поврежденных кожаных переплетов документов выделено более 40 культур микромицетов, большая часть которых относится к родам Aspergillus и Penicillium. Также встречаются представители родов Alternaria, Botrytis, Trichoderma, Oospora [1, 6].

Исследовали культуры семи грибов: Aspеrgillus fumigatus Fresen, A. ustus (Bainier) Thom & Church, Penicillium camemberti Sopp, P. cyclopium Westling, P. janthinellum Biourge, P. notatum Westling, P. terrestre C. N. Jensen.

Исследовали кожу хромового дубления трех видов, которую в настоящее время в Российской национальной библиотеке применяют для реставрации и изготовления кожаных переплетов: КС-1, КРС-2, КРС-3.

Степень потребления кожи оценивали различными методами: по интенсивности образования микромицетами конечного продукта разложения – углекислого газа, по потере массы, изменению рН и концентрации внеклеточных белков [1, 6].

У большинства культур максимальное количество выделившегося СО2 наблюдается после 30–75 суток роста.

Наиболее активно двуокись углерода выделяли P. camemberti, P. janthinellum и A. ustus (рис. 1). Среди микромицетов, менее активно образующих СО2, две культуры – А. fumigatus, P. cyclopium.

В ходе эксперимента замечены различия в потреблении кожи трех исследованных видов. Наиболее активный рост наблюдали на КРС-1. Через 30–75 суток 50 % исследуемых культур активно использовали КРС-1 и КРС-2, а через 4 месяца почти все культуры более активно разрушали КРС-1 по сравнению с кожей других видов.

Наблюдали отчетливую зависимость концентрации выделяемой грибами двуокиси углерода от площади доступной для них поверхности повреждаемого материала. Активность роста микромицетов на образцах одинаковой массы, но разной площади – 4,4 см2 и 6,8 см2 – различна: при увеличении поверхности в 1,5 раза количество выделившегося СО2 увеличилось соответственно в 1,5–2 раза.

В 85 % случаев микромицеты активнее растут на коже, имеющей большую удельную поверхность, что проявляется либо в более интенсивном выделении СО2, либо в большей скорости потребления субстрата. Наиболее активным деструктором КС-1 является культура P. janthinellum (максимальное количество выделившегося СО2 – 11,4 %), менее всех способен использовать КС-1 в качестве источника углерода P. cyclopium (максимальное количество СО2 – 9,3 %) (рис. 5).

При росте культур на КС-1 с большей площадью доступной поверхности (Sпов. = 6,8 см2) на 12 сутки концентрация выделившегося СО2 в 2–3 раза превышает концентрацию двуокиси углерода, выделившейся на коже с Sпов. = 4,4 см2. В дальнейшем разница активности выделения СО2 не заметна.

На 12 сутки культивирования (рис. 6) концентрация образующейся двуокиси углерода при росте на КРС-2 с разной площадью поверхности отличается незначительно (в среднем на 2 %). Исключение составляют A. ustus и P. terrestre, у которых на коже с более доступной поверхностью концентрация СО2 выше на 42 и 91 % соответственно. К 75–124 суткам эксперимента наблюдаются значительные различия в концентрации СО2: при росте всех культур на коже с Sпов. = 6,8 см2 концентрация образовавшегося СО2 в 2–3 раза больше, чем при росте на коже с Sпов. = 4,4 см2, а при росте P. janthinellum – в 6 раз.

Наиболее активными деструкторами КРС-2 являются P. terrestre и P. janthinellum, менее всех способны ее использовать в качестве источника углерода культуры А. fumigatus и P. camemberti.

В среднем потеря массы кожи при росте 7 исследованных культур составила от 0,75 до 2,52 % от массы исходного образца. Наиболее активными деструкторами кожи являются P. notatum и P. terrestre, P. janthinellum, а наибольшую потерю массы наблюдали при росте всех микромицетов на КРС-1 (рис. 2).

В процессе роста микромицетов на коже происходит изменение ее рН в щелочную сторону: значение рН кожи КС-1 в среднем возросло на 0,7, кожи КРС-1 – на 0,6, а кожи КРС-2 – незначительно, на 0,1–0,2. Эти данные свидетельствуют о том, что лучше грибами потребляются КС-1 и КРС-1.

Наиболее активно использовали в качестве субстрата компоненты кожи А. fumigatus (среднее значение ΔрН= 0,8) и P. terrestre (ΔрН= 0,7), менее всех – P. cyclopium (рН = 0,45).

Рис. 1. Максимальное образование СО2 микромицетами при культивировании на коже: а – P. camemberti, б – А. fumigatus, в – P. cyclopium, г – P. notatum, д – A. ustus, е – P. janthinellum, ж – P. terrestre

Рис. 2 Расчетная потеря массы кожи при росте микромицетов: а – P. camemberti, б – А. fumigatus, в – P. cyclopium, г – P. notatum, д – A. ustus, е – P. janthinellum, ж – P. terrestre

При культивировании микромицетов на КС-1 необходимо выделить А. fumigatus, так как при его росте произошло наиболее значительное увеличение значения рН от 3,6 до 5,1, а после выращивания остальных грибов значение рН кожи в среднем составляло 4,0–4,5. На КРС-1 активнее всех росли А. fumigatus и P. cyclopium.